Examenul scaun este un studiu de laborator in care scaun (fecale) este examinat pentru detectarea paraziților intestinali. Este una dintre cele mai simple și mai vechi tehnici de laborator, fiind inițial dezvoltată de Anton Van Leeuwenhoek în secolul al XVIII-lea.
Anton Van Leeuwenhoek, considerat părintele microbiologiei, a folosit metoda coproparasitoscopică „directă” pentru a-și observa propriile fecale și a descris ce ani mai târziu a fost identificat ca trofozoitele Giardiei lamblia, un protozoan care invadează intestinul subțire al omului.
Ascaris lumbricoides formă pentru adulți (Sursa: Wikimedia Commons)
Bolile parazitare afectează milioane de oameni în lume, în special în țările sărace sau subdezvoltate, unde există condiții sanitare precare legate de eliminarea excretelor și consumul de apă contaminată.
Diagnosticul acestor boli este important pentru un tratament adecvat, examinarea coproparasitoscopică fiind un instrument indispensabil pentru aceasta. Este un test de laborator simplu, rapid și ieftin.
Examinarea scaunului include mai multe tehnici care, pe lângă faptul că permit vizualizarea directă și cuantificarea ouălor, trofozoitelor, chisturilor sau larvelor, permit identificarea structurilor microorganismului și astfel identificarea parazitului.
Tehnicile utilizate pentru examinarea coproparasitoscopică includ tehnici de colorare albastru de metilen, metode de concentrare, tehnica Faust, Richie, tehnici de sedimentare și examene directe, unice sau seriale.
Ou nefertilizat de Ascaris lumbricoides. (Sursa: Centre pentru controlul și prevenirea bolilor, prin Wikimedia Commons).
Prelevarea de probe
Pentru a efectua acest studiu, pacientul trebuie să ia un eșantion de scaun proaspăt care nu este contaminat cu urină, apă, sânge (menstrual) sau sol. Eșantionul trebuie să aibă dimensiunea unei nuci sau, dacă este lichid, trebuie să fie cel puțin volumul corespunzător a două linguri.
Pacientul nu trebuie să fi luat medicamente parazitare cu cel puțin trei zile înainte de a lua proba sau pentru perioada indicată de medicul său. De asemenea, nu ar trebui să utilizați medicamente laxative.
Probele trebuie plasate într-un recipient uscat, cu gură largă, căptușit sau într-un recipient de unică folosință special conceput (disponibil de la farmacie preferată). Probele trebuie plasate într-un mediu rece, nu trebuie refrigerate mai mult de 24 de ore și nu trebuie depozitate în apropierea surselor de căldură sau înghețate.
Atunci când examinarea indicată este în serie, sunt necesare cel puțin trei probe, care trebuie să fie luate la fiecare 24 de ore sau mai mult, așa cum este indicat de medic. În aceste cazuri, laboratoarele furnizează, în general, un set de flacoane care conțin soluții cu conservanți.
Când pacientul observă un „vierme” în scaun, dacă este posibil, ar trebui să îl plaseze într-o sticlă închisă cu apă și să-l ducă la laborator împreună cu sticla de probă de scaun.
Flacoanele cu eșantioanele sau cu „viermii” trebuie să fie etichetate și identificate cu numele pacientului, vârsta, sexul și data și ora colectării eșantionului.
Este foarte important să instruiți în mod adecvat pacientul cu privire la toate aceste aspecte ale prelevării și manipulării probelor, deoarece depinde dacă elementele care pot exista în eșantionul menționat rămân viabile pentru observare, identificare și diagnostic.
Tehnici
Există examene coproparasitoscopice directe și tehnici de suspendare și concentrare a probelor care sunt utilizate de multe ori pentru a evita falsele negative și pentru a observa probe mult mai curate. Unele tehnici de colorare sunt, de asemenea, utilizate pentru identificarea anumitor paraziți.
Examenele directe
Examinarea directă a scaunului, folosind tehnica picăturii pendinte, constă în diluarea probei de scaun cu soluție fiziologică (0,9% NaCl) și plasarea unei picături a acestei soluții într-o concavitate care are o lamelă specială. în acest scop.
Odată ce picătură este plasată pe lamelă, aceasta este acoperită cu o copertă și observată la microscop. Această tehnică ne permite să observăm ouă și chisturi, dar ne permite și observarea oricărui element mobil, cum ar fi flagelele, larvele, trofozoitele, ciliatele etc.
Tehnici de suspendare și concentrare
Tehnicile de suspensie folosesc o soluție mai densă decât elementele care trebuie observate, astfel încât acestea plutesc pe suprafața lichidului și pot fi colectate, deoarece acestea rămân concentrate în stratul superficial al soluției.
Această tehnică are avantajul că permite să existe un eșantion destul de curat de resturi, deoarece acestea, fiind mai dense, rămân în partea de jos a sticlei. Dezavantajul relativ este că soluția se micșorează și deformează microorganismele într-un timp scurt.
Aceste metode nu sunt utilizate pentru ouă de helmint și cestode, deoarece sunt foarte grele și nu plutesc în aceste soluții. Sunt utilizate pe scară largă pentru observarea protozoarelor sub forma lor tropozoică sau a ouălor lor și pentru observarea larvelor, cum ar fi cele ale Strongyloides stercoralis.
O altă tehnică folosită pe scară largă, deoarece nu deformează microorganismele din eșantion și este simplă și ieftină este tehnica de sedimentare a formalinei.
Exemple de tehnici de concentrare includ tehnicile lui Faust și Richie.
Diferitele tehnici care permit vizualizarea microscopică a ouălor, larvelor sau a altor elemente ale diferiților paraziți intestinali, combinate cu tehnicile de colorare, permit identificarea și diagnosticul acestor boli.
Exemple
În continuare, este descris un caz clinic și sunt prezentate câteva imagini care ilustrează utilitatea examinării scaunului pentru diagnostic și evaluarea beneficiilor tratamentului.
Ou Trichuris trichuria (Sursa: CDC / Dr. Mae Melvin, amabilitate: Public Image Image Library prin Wikimedia Commons)
Un pacient bărbat în vârstă de 18 ani vine la cabinetul medicului pentru dureri abdominale colioase, mai intens în zona periumbilicală, greață și episoade de diaree apoasă.
La întrebarea pacientului, medicul a notat două puncte importante: 1) pacientul a raportat că s-a făcut baie într-un lac într-o zonă rurală și 2) a fost lovit de faptul că scaunul său plutea în toaletă. După examinarea pacientului, medicul bănuiește prezența Giardiei lamblia.
Ciclul vieții Giardia lamblia (Sursa: LadyofHats prin Wikimedia Commons)
Acest protozoan este adăpostit în intestinul subțire al omului și interferează cu absorbția grăsimilor, ceea ce generează scaune foarte grase, care tind să plutească. Poluarea apare frecvent din apa poluată în lacuri sau pâraie din zonele rurale sau din bazine slab întreținute sau căzi cu hidromasaj.
Tropozoitele Giardia lamblia (Sursa: Foto de Eva Nohýnková, Departamentul de Medicină Tropicală, Facultatea de Medicină I, Universitatea Charles din Praga și Spitalul Bulovka, Republica Cehă. Imagine în hârtie de Marie Lipoldova, Laboratorul de Imunologie Moleculară și Celulară, Institutul Molecular Genetică, Academia de Științe a Republicii Cehe, Praga, Republica Cehă prin Wikimedia Commons)
Medicul comandă un examen de scaun, iar rezultatele confirmă prezența Giardia lamblia. După încheierea tratamentului, este indicată o altă examinare a scaunelor, care confirmă absența chisturilor sau trofozoitelor Giardia lamblia.
Referințe
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Prevalența puterniciloidiozei în America Latină: o revizuire sistematică a literaturii. Epidemiologie și infecție, 143 (3), 452-460.
- de Haro Arteaga, I., & Ruiz, AEC (2014). Diagnosticul de. Parazitologie medicală (4a, 347).
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., & Cordovi, RA (2003). Utilitatea a 2 metode coproparazitologice și utilizarea lor într-un studiu terapeutic antigiardiasis. Cuban Journal of Tropical Medicine, 55 (3), 174-178.
- Preț, -DL (2017). Manual de procedură pentru diagnosticul paraziților intestinali. CRC Press.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M., și Orhan, R. (1984). Un studiu copro-parazitologic asupra luptătorilor echipei naționale. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114-118.